BazEkon - The Main Library of the Cracow University of Economics

BazEkon home page

Main menu

Author
Kawacka Ilona (Uniwersytet Przyrodniczy w Poznaniu), Olejnik-Schmidt Agnieszka (Uniwersytet Przyrodniczy w Poznaniu)
Title
Genoserotyping of Listeria Monocytogenes Strains Originating from Meat Products and Meat Processing Environments
Genoserotypowanie izolatów Listeria monocytogenes pochodzących z produktów mięsnych i środowiska produkcyjnego
Source
Żywność: nauka - technologia - jakość, 2022, R. 29, nr 2 (131), s. 34-44, tab., rys., bibliogr. 24 poz.
Keyword
Bezpieczeństwo zdrowotne żywności, Kontrola jakości, Badanie żywności, Mikrobiologia, Mięso
Food health safety, Quality inspection, Food research, Microbiology, Meat
Note
streszcz., summ.
This research was funded by the Faculty of Food Science and Nutrition, Poznań University of Life Sciences, Poznań, Poland, grant for young researchers No 506.771.03.0
Abstract
Wprowadzenie. Listeria monocytogenes jest ludzkim patogenem związanym z żywnością oraz czynnikiem wywołujący listeriozę, czyli chorobę o wysokim odsetku śmiertelności. Serotypowanie jest metodą różnicowania izolatów L. monocytogenes w oparciu o unikatowe kombinacje antygenów somatycznych (O) i rzęskowych (H) na powierzchni ich komórek. Klasyczne serotypowanie jest wykonywane z wykorzystaniem metod aglutynacyjnych, które wymagają użycia przeciwciał. Istnieją jednak metody genosero- typowania, które pozwalają zakwalifikować izolaty L. monocytogenes do poszczególnych grup serotypów (nazywanych serogrupami) na podstawie analiz genetycznych. Różnicowanie izolatów L. monocytogenes jest ważnym zagadnieniem w kontekście bezpieczeństwa żywności, kontroli i śledzenia źródeł skażeń. W niniejszej pracy przedstawiamy wyniki genoserotypowania 153 izolatów L. monocytogenes pochodzących z produktów mięsnych i środowiska produkcyjnego w polskich zakładach przetwórstwa. Do przeprowadzenia analiz genoseroptyu wykorzystano dwie metodyki: pierwsza pozwala na rozróżnienie czterech najczęściej występujących serotypów (1/2a, 1/2b, 1/2c oraz 4b), natomiast druga pozwala rozróżnić hiperwirulentny serowar 4h od innych serotypów.
Wyniki i wnioski. Otrzymane oboma metodami wyniki były zgodne i wszystkie izolaty zostały zakwalifikowane do odpowiadających sobie serogrup w obrębie obu metodyk. Większość izolatów (73.9 %) została scharakteryzowana jako należąca do serogrupy IIa (reprezentującej serowary 1/2a, 3a). Serogrupa IVb (4b, 4d, 4e) była drugą najbardziej liczną (zawierała 18.3 % izolatów), a następnie IIb (1/2b, 3b, 7) oraz IIc (1/2c, 3c), przy czym ostatnie dwie grupy były równoliczne (i każda z nich zawierała 3.9 % wszystkich izolatów). Żaden z zebranych izolatów nie należał do serogrupy reprezentującej serotypy 4a, 4c, 4ab i 4h. (abstrakt oryginalny)

Background. Listeria monocytogenes is a foodborne human pathogen and a causative factor of listeriosis, which is an illness with a high mortality rate. Serotyping is a method for differentiating L. monocyto- genes isolates based on unique combinations of somatic (O) and flagellar (H) antigens on the surface of their cells. Standard serotyping involves agglutination methods, which require using antisera. However, there are also genoserotyping methods which allow to categorise L. monocytogenes isolates into particular groups of serotypes (referred to as serogroups) based on genetic analyses. Differentiating L. monocytogenes isolates is an important issue in terms of food safety, surveillance and traceability of contamination sources. In this work, we present results of the genoserotyping of 153 L. monocytogenes isolates originating from meat products and meat processing environments at Polish processing plants. Two protocols were used for genoserotyping analyses: the first one allows to differentiate between four most common serotypes (1/2a, 1/2b, 1/2c and 4b) and the second one allows to distinguish hipervirulent serovar 4h from other serotypes.
Results and conclusion. Results achieved using both methods were consistent and all isolates were categorised into corresponding serogroups within the two methodologies. Most of the isolates (73.9 %) were characterised as members of the IIa serogroup (representing the 1/2a, 3a serovars). The IVb (4b, 4d, 4e) serogroup was the second most common (and comprised 18.3 % of isolates), followed by IIb (1/2b, 3b, 7) and IIc (1/2c, 3c), however, the last two groups were equally numerous (and each of them comprised 3.9 % of all isolates). None of the collected isolates belonged to the serogroup representing the 4a, 4c, 4ab and 4h serotypes. (original abstract)
Accessibility
The Main Library of the Cracow University of Economics
Full text
Show
Bibliography
Show
  1. Alía A., Andrade M.J., Córdoba J.J., Martín I., Rodríguez A.: Development of a multiplex real-time PCR to differentiate the four major Listeria monocytogenes serotypes in isolates from meat processing plants. Food Microbiol., 2020, 87, # 103367.
  2. Bintsis T.: Foodborne pathogens. AIMS Microbiol., 2017, 3(3), 529-563.
  3. Borucki M.K., Call D.R.: Listeria monocytogenes Serotype Identification by PCR. J. Clin. Microbiol., 2003, 41(12), 5537-5540.
  4. Burall L.S., Simpson A.C., Datta A.R.: Evaluation of a serotyping scheme using a combination of an antibody-based serogrouping method and a multiplex PCR assay for identifying the major serotypes of Listeria monocytogenes. J. Food Prot., 2011, 74(3), 403-409.
  5. Chen Y., Chen Y., Pouillot R., Dennis S., Xian Z., Luchansky J.B., Porto-Fett A.C.S., Lindsay J.A., Hammack T.S., Allard M., Van Doren J.M., Brown E.W.: Genetic diversity and profiles of genes associated with virulence and stress resistance among isolates from the 2010-2013 interagency Listeria monocytogenes market basket survey. PLoS One,2020,15(4), #0231393.
  6. Chen Y., Knabel S.J.: Multiplex PCR for Simultaneous Detection of Bacteria of the Genus Listeria, Listeria monocytogenes, and Major Serotypes and Epidemic Clones of L. monocytogenes. Appl. En- viron. Microbiol., 2007, 73(19), 6299-6304.
  7. Coban A., Pennone V., Sudagidan M., Molva C., Jordan K., Aydi, A.: Prevalence, virulence characterization, and genetic relatedness of Listeria monocytogenes isolated from chicken retail points and poultry slaughterhouses in Turkey. Braz. J. Microbiol., 2019, 50(4), 1063-1073.
  8. De Santis E.P.L., Pilo A.L., Cosseddu A.M., Canu N.A., Scarano C., Marongiu P.: Multiplex PCR for the identification and serotyping of L. monocytogenes isolated from sheep cheese-processing plants. Vet. Res. Commun., 2007, 31, 359-363.
  9. Doumith M., Buchrieser C., Glaser P., Jacquet C., Martin P.: Differentiation of the Major Listeria monocytogenes Serovars by Multiplex PCR. J. Clin. Microbiol., 2004, 42(8), 3819-3822.
  10. Feng Y., Yao H., Chen S., Sun X., Yin Y., Jiao X.: Rapid Detection of Hypervirulent Serovar 4h Listeria monocytogenes by Multiplex PCR. Front. Microbiol., 2020, 26, 11, 1309.
  11. Gorski L.: Serotype Assignment by Sero-agglutination, ELISA, and PCR. Methods Mol. Biol., 2021, 1157, 41-61.
  12. Kaptchouang Tchatchouang C.-D., Fri J., De Santi M., Brandi G., Schiavano G.F., Amagliani G., Ateba C.N.: Listeriosis Outbreak in South Africa: A Comparative Analysis with Previously Report- ed Cases Worldwide. Microorg., 2020, 17, 8(1), 135.
  13. Kurpas M., Osek J., Moura A., Leclercq A., Lecuit M., Wieczorek K.: Genomic Characterization of Listeria monocytogenes Isolated From Ready-to-Eat Meat and Meat Processing Environments in Po- land. Front Microbiol., 2020, 11, #1412.
  14. Li F., Ye Q., Chen M., Zhang J., Xue L., Wang J., Wu S., Zeng H., Gu Q., Zhang Y., Wei X., Ding Y., Wu Q.: Multiplex PCR for the Identification of Pathogenic Listeria in Flammulina velutipes Plant Based on Novel Specific Targets Revealed by Pan-Genome Analysis. Front. Microbiol., 2021, 11, #634255.
  15. Nho S.W., Abdelhamed H., Reddy S., Karsi A., Lawrence M.L.: Identification of high-risk Listeria monocytogenes serotypes in lineage I (serotype 1/2a, 1/2c, 3a and 3c) using multiplex PCR. J. Appl. Microbiol., 2015, 119, 3, 845-852.
  16. Paillard D., Dubois V., Duran R., Nathier F., Guittet C., Caumette P., Quentin C.: Rapid Identification of Listeria Species by Using Restriction Fragment Length Polymorphism of PCR-Amplified 23S rRNA Gene Fragments. AEM, 2003, 69, 11, 6386-6392.
  17. Psareva E.K., Liskova E.A., Razheva I.V., Yushina Y.K., Grudistova M.A., Gladkova N.A., Potemkin E.A., Zhurilov P.A., Sokolova E.V., Andriyanov P.A., Voronina O.L., Kolbasov D.V., Ermolae- va S.A.: Diversity of Listeria monocytogenes Strains Isolated from Food Products in the Central European Part of Russia in 2000-2005 and 2019-2020. Foods, 2021, 10, 11, #2790.
  18. Quereda J.J., Morón-García A., Palacios-Gorba, C. Dessaux, C. García-del Portillo, F. Pucciarelli, M.G. Ortega, A.D.: Pathogenicity and virulence of Listeria monocytogenes: A trip from environmental to medical microbiology. Virulence, 2021, 12, 1, 2509-2545.
  19. Seeliger H.P.R., Höhne K.: Serotyping of Listeria monocytogenes and Related Species. In: Methods in Microbiology. Eds. Bergan T., Norris J.R., vol. 13, Academic Press, 1979, pp. 31-49.
  20. Simonavičienė I., Zakarienė G., Lozoraitytė A., Zaborskienė G., Gerulis G., Stimbirys A.: Identification and serotyping of Listeria monocytogenes, isolated from various salmon products, sold in retail market in Lithuania. Ital. J. Food Saf., 2021, 10, 3, 9341.
  21. Vitullo M., Grant K.A., Sammarco M.L., Tamburro M., Ripabelli G., Amar C.F.L.: Real-time PCRs assay for serogrouping Listeria monocytogenes and differentiation from other Listeria spp. Mol. Cell. Probes, 2013,27, 1, 68-70.
  22. Wang Y., Ji Q., Li S., Liu M.: Prevalence and Genetic Diversity of Listeria monocytogenes Isolated From Retail Pork in Wuhan, China. Front. Microbiol., 2021, 12, 620482.
  23. Yin Y., Yao H., Doijad S., Kong S., Shen Y., Cai X., Tan W., Wang Y., Feng Y., Ling Z., Wang G., Hu Y., Lian K., Sun X., Liu Y., WangC., Jiao K., Liu G., Song R., Chen X., Pan Z., Loessner M.J., Chakraborty T., Jiao X.: A hybrid sub-lineage of Listeria monocytogenes comprising hypervirulent isolates. Nat. Commun., 2019, 10, #4283.
  24. Zhu Q., Gooneratne R., Hussain M.A.:Listeria monocytogenes in Fresh Produce: Outbreaks, Prevalence and Contamination Levels. Foods, 2017, 6, 3, #21.
Cited by
Show
ISSN
2451-0769
Language
eng
URI / DOI
http://dx.doi.org/10.15193/zntj/2022/131/414
Share on Facebook Share on Twitter Share on Google+ Share on Pinterest Share on LinkedIn Wyślij znajomemu